Articulistas Enfermedades Vegetales y Plagas Venezuela

Los taladradores del tallo de la caña de azúcar en Venezuela

*Blas Linares

 

RESUMEN

En la década de los 40 la infestación por los taladradores de la caña de azúcar del genero Diatraea (Lepidoptera: Crambidae) en Venezuela estaba por encima del 25% en términos de entrenudos perforados. A partir de 1947 se inicia el programa de liberación de la mosca amazónica (Lydellaminensis) en el área de influencia del central El Palmar, el cual se mantiene hasta la actualidad, incorporándose progresivamente el resto de las zonas productoras. Este primer programa demostró sus bondades hasta finales de los 80 al lograrse disminuir los daños hasta un 5%. En 1987 se introdujo comercialmente Cotesiaflavipes el cual ha complementado el efecto del primer bioregulador a tal punto que pueden lograse disminuciones por debajo del 1%. Esta representa una meta tangible de los actuales programas de manejo. Se han señalado de importancia económica las especies D. saccharalisFabricius, D. centrellaMoeschler, D. rosa Heinrich, D. busckellaDyar& Heinrich y D. impersonatella Walker.

Caracteres generales de los huevos

Los huevos son colocados en masa o postura, superpuestos como escama de pescado. Individualmente son ovales, elípticos y aplanados. Están unidos entre si y al sustrato mediante una sustancia producida por la glándula accesoria de la hembra al momento de la ovoposición. Son de color amarillo en el momento de la ovipostura y la cutícula presenta una reticulación irregular con la huella dejada en ellos por las células foliculares de la ovariola durante el proceso de ovogénesis. El tamaño varía de acuerdo a la especie. Cuando están próximos a la eclosión es factible notar la larva con sus segmentos bien definidos y con la cápsula cefálica marrón casi negro. Las diferencias, observadas al estereoscopio, entre los huevos de las cinco especies venezolanas son básicamente de forma y tamaño.

La larva

Es una larva eruciforme típica del orden Lepidóptera, sin setas secundarias. Con patas (pat) y propatas (pro) normales. Ganchos de las propatastriordinales en círculo completo y en banda longitudinal en la propata anal. Escudo cervical ancho, dividido y con lunares característicos dispuestos irregularmente. Con tubérculos meso (MES) y metatorácico (MET) variables en forma, pigmentado y sin setas. Espiráculos (ESP) alargados u ovales, siendo el protorácico dos veces más grande que los abdominales del uno al siete y, el del segmento ocho ligeramente más grande que el protorácico y ubicado más dorsalmente que el resto de los abdominales. Tubérculos (tub) o pináculos ligeramente quitinizados. Setas dorsales D1, de los segmentos abdominales del uno al siete separados, con tendencia a unirse al octavo y completamente separados en el segmento nueve. Setas laterales L 1 Y L2, de los segmentos abdominales del uno al ocho muy cerca la una de la otra y ubicados debajo del espiráculo. Tubérculopreespiracular lateral del protórax angosto, alargado horizontalmente, ubicado debajo del espiráculo y llevando las setas L 1 Y L2. Tubérculossubventrales (Sv), de pro, meso y metatórax y del primero, segundo y séptimo segmento abdominal bisetosos. Tubérculossubventrales del octavo y noveno segmento unisetosos y trisetosos del tercero al sexto segmento. Seta subdorsal SD1, por encima del espiráculo en los segmentos abdominales del uno al siete y ubicados antedorsalmente al espiráculo en el segmento ocho. Seta SD2 presente solo en meso y metatórax. El noveno segmento abdominal con tres pares de setas: D1, D2 Y L3. En el resto de los segmentos abdominales D2 es ligeramente más corta y se ubica posteriormente a D1. En el esclerito cervical (CER), las setas XD1, XD2 Y SD1 están ubicadas cerca del margen anterior. La distancia entre D1 y D2 es una vez y media menor que la existente entre XD1 y SD1. La seta D2 está ubicada dorsalmente a XD2 y la distancia entre SD1 y SD2 es ligeramente menor que la existente entre XD2 y SD1. Capsulacefálicaesférica o ligeramente trapezoidal o ampliamente oval. Vista dorsalmente, tan o más ancha que alta, con una incisión en el margen dorsal posterior. Frontoclipeo (Fr) más alto que ancho. Áreaadfrontal (Adfr) convergente en la sutura coronal (SC) y limitada por las respectivas suturas adfrontales (SA). Con seis ocelos, el tres y el cuarto más juntos entre ellos que el resto. Opistosoma (OP) con dos setas normales (E1, E2). Punturas frontales (Fa) próximas y ubicadas entre las setas frontales (F1). Setas Adf2 bien diferenciadas a ambos lados de la sutura coronal. Epicráneo (Ep) con número normal de setas primarias y tres punturas ultraposteriores (X). Setas anteriores A1, A2 Y A3, ubicadas en ángulomás o menos recto. Seta posterior P1 ubicada al mismo nivel del comienzo de la sutura coronal y P2 ubicada a nivel con el comienzo de las suturas frontales. Puntura Pa, ligeramente más cercana a L1 que a otra seta y ubicada entre P1 y L1. Seta lateral L1, ubicada posterodorsalmente a L1. Setas ocelares (O1, O2 y O3) bien separadas. Seta O2, ubicada posteriormente al ocelo uno. Seta O3, ubicada lejos y posteriormente a la seta O2 y más cerca de la seta subocelar S03, ubicadas triangularmente. Antena normal, trisegmentada. Labro con una incisión media moderadamente cóncava. Mandíbula provista en su área cortante de dientes variables en forma, número y tamaño y con un diente o retinaculum en su cara interna que no alcanza el área cortante). Maxila típica, constituida por el cardo (Car), el estipes (Es) y el palpo maxilar (Pm). El labio constituido por el submentón (Sm) ubicado en la cara ventral de la cápsulacefálica, el mentón (Men), los palpos labiales (PI) y el espineret (Spn). En las especies D. rosa, D. busckella y D. centrella es frecuente localizar larvas pálidas, en condiciones de campo, con caracteres similares a los observados en especies invernantes como D. saccharalis y D. zeocolella del sur de los Estados Unidos de Norteamérica, ya D. grandiosella de México representado en una decoloración completa de los tubérculos con un abultamiento intersegmentalcaracterístico. Haciendo una selección de larvas no pálidas en las especies estudiadas es observable, en apariencia, ciertos patrones de coloración definida. Las cinco especies son uniformes en cuanto a la quetotaxia de los segmentos abdominales, forma y disposición de los ganchos de la propata y la estructura de los apéndicesgnatales. De la misma manera es observable que la forma y disposición de los tubérculos, así como los lunares característicos ubicados sobre el escudo cervical y la placa anal, no obedecen a un patrónmorfológico definido de distribución.

La pupa

Es del tipo obtecta y alargada. El pilifer (Pf) y los palpos maxilares (Pm) están bien desarrollados. Las patas pro y mesotorácica (pat1 y pat2) están extendidas cefálicamente entre la pieza ocular (O) y la antena (Ant). Los ojos son esculpidos y vidriosos. El labro (Lbr), la sutura fronto-clipeal (SFC) y la invaginación del brazo anterior del tentorium (pta) están bien definidas. La frente (Fr) extendida anteriormente como dos proyecciones, variables en forma y tamaño. La maxila (pm) es prominente y está extendida hasta la mitad del largo de las alas (AA). Las alas se localizan extendidas medioventralmente hasta el cuarto segmento abdominal. La pata mesotorácico (Pat2) no se extiende hasta el tope del ala. La pata metatorácica (Pat3) se extiende hasta el tope o casi hasta el tope del ala. El fémur de la pata protorácica (Fe1) está bien definido. La antena (Ant) no llega hasta el tope del ala. En general el cuerpo es áspero y sin setas. No posee cremaster y en la región anal se localizan en los segmentos ocho, nueve y diez, unos lóbulosespiniformes (TE), variables en número y tamaño. Esta pupa posee en la región dorsal del pro, meso, metatórax y segmentos abdominales del uno al nueve, unas corrugaciones con aspecto de aserrín. Estas estructuras se circunscriben sólo al áreadorsocentral, en los segmentos abdominales del cinco al ocho. La pupa tiene una abertura genital (AG) simple, en forma de hendidura que se localiza ventralmente dividiendo en forma transversal al octavo segmento abdominal (A8) en la hembra. En el macho, esta hendidura se localiza en el noveno segmento abdominal (A9), muy cerca de la abertura anal (AAn). Esta última es una hendidura que termina en dos líneas laterales cortas que toman la forma de Y invertida, ubicada en el décimo segmento abdominal (A10) en ambos sexos. La identificación específica utilizando la pupa, cuenta con menor apoyo morfológico, puesto que existe una gran uniformidad en los caracteres de las cinco especies. Sin embargo, se observa mayor estabilidad en los escasos detalles a estudiar. Así, las proyecciones anteriores cefálicas correspondientes a la frente y a las espinas o lóbulos espiniformes de los segmentos abdominales ocho, nueve y diez ayudan a separarlas.

Características generales del adulto

La frente puede ser algo convexa, lisa y protuberante, tuberculada o fuertemente cónica. El palpo labial casi recto, curvado hacia abajo, liso y extendido dos veces a la longitud de la cabeza. Palpo maxilar apical dilatado y cubierto de escamas. Antenas algo dilatadas, diminutamente pubescente y piliforme. Alas anteriores deflectadas cuando el insecto está en reposo, alargadas y subtriangulares. El color varía de amarillo a marrón o grisáceo a veces con tonalidad rosada, a veces con líneas transversales sobre las alas o líneasmás oscuras a lo largo de las venas. En el ala anterior, el punto discal con frecuencia presente en el área correspondiente a la celda discal. Con tres venas anteriores al ángulo de la celda discal. Las venas mediales M2 y M3 separadas o unidas en el origen o entalladas por alguna distancia. La vena M1 sale debajo del ápice de la celda discal. La radial RS sale del ápice de la celda discal. Las R3 y R4 están entalladas y saliendo antes del ápice de la celda discal. La R2 sale basalmente de la celda discal y entallada con la R3 + R4. La subcosta SC está anastomosada a la R1. Alas posteriores menos plegadas y con freno. Las venas M2 y M3 salen del ángulo de la celda discal, separadas o unidas desde el origen o entalladas por alguna distancia. Patas cortas, con el par medio más largo. Tarso pentámero. Fémur alargado. Tibias de las patas anteriores y medias con dos espuelas y el par posterior con cuatro. La tibia del macho generalmente con numerosas escamas alargadas en forma de pelos en el margen interior. Genitalia del macho bien desarrollada. Gnathos (Gn) raramente bifurcado. Uncus (Un) de algunas especies más ancho que largo. Tegumen (Teg) frecuentemente con lóbulos grandes (Iob). La valva (Va) presenta un proceso subbasal (Pr) en la parte costal (Co). El sacus (Sa) está presente. El vinculatum (Vin) es angosto. Juxta (Jux) con brazos largos. Aedeago con una armadura simple o a veces con un esclerito o cornuti (Cor) ubicado subapicalmente. La genitalia de la hembra, con una papila anal ancha (PA). La bolsa copulatoria abre ventralmente en el séptimoesternito abdominal (AB), bien separado del octavo tergito abdominal. El conducto de la bolsa copulatoria es generalmente corto y usualmente algo esclerotizado. La bolsa copulatoria (BC) es grande, con cuerpo de la bolsa a veces definido (CB). En la fase adulta se presentan caracteres morfológicosmás definidos y con menos variabilidad, lo que garantiza la identificaciónespecífica. En este trabajo se plantea la determinación de las especies, mediante la combinación de caracteres, los cuales utilizados en forma continua pueden permitir el reconocimiento sin el auxilio de equipos especiales. Así, y en vista de que la genitalia constituye el caráctermás preciso en la determinación, se requiere hacer por lo menos una disección parcial. Esto es, la eliminación de la cutícula lateralmente, a nivel del octavo segmento abdominal para detectar el lóbulo del tegumen en el macho y la eliminación de las escamas para observar la conformación externa de la abertura de la bolsa copulatoria en la hembra; por ello, se han diseñado las características específicas según el fin propuesto.

Biología: de huevo a adulto

Las cinco especies conocidas oviponen en masa, aunque pueden encontrarse huevos aislados, generalmente en el envés de la hoja, en la vaina y eventualmente sobre el tallo. Las larvas recién emergidas se alimentan de la epidermis foliar y posteriormente perforan y penetran el tallo donde completan su ciclo larval y de pupa. La larva poco antes de ser prepupa asegura la ventana de salida del adulto dejando una ventana marcada en la capa externa del tallo. Se ha estudiado bien sólo la bióloga de D. saccharalis, sin embargo, las observaciones de campo revelan que cada especie tiene una duración de desarrollo diferente, la cual hace algunas especies másdañinas, y que el mismo tiene relación con las característicasfenológicas y fisiológicas del cultivo. En el estudio biológico deD. saccharalis en 1986 se observó que la duración completa del ciclo fue de 38,25 días para el macho y 40,80 días para la hembra, predominado larvas con seis instares larvales.

Daños ocasionados por la larva

Las larvas recién emergidas se alimentan de la epidermis foliar y posteriormente perforan y penetran el tallo donde completan su ciclo larval y de pupa. Los daños están asociados a la destrucción interna del tejido vegetal y pudrición secundaria por microrganismos. Ambos conllevan a la reducción del peso y contenido de azúcar de la caña.

Muestreo masivo sobre este complejo taladradores

El muestreo masivo, ha sido considerado más eficiente para medir los niveles reales de parasitismo en los campos cañeros. Consiste en seleccionar entre 350 y 400 tallos de caña perforados por taladradores de la caña de azúcar y se contabiliza, en cada uno, el número de larvas y pupas de los taladradores: D. saccharai, D. rosa, D. centrella, D. buschella y D. impersonatella y Valentinia(otro género); los parásitos: Cotesiasp., Lydellaminensis, Metharriziumsp., entre otros. Los resultados son: Porcentaje de parasitismo (PDP). Parasitismo por Cotesia (PPC). Parasitismo por Lydella (PPL). Porcentaje de Diatraeasaccharalis (PDS). Porcentaje de Diatraeacentrella (PDC). Porcentaje de Diatraea rosa (PDR). Porcentaje de Diatraeabusckella (PDB). Porcentaje de Diatraeaimpersonatella(PDI). Porcentaje de Valentinia(PDV).

Evaluación de cogollos muertos (cañas recién emergidas)

En cinco puntos de muestreo de cada tablón se define un área de 2 m lineales y se registra el número total de cogollos, asi como el número de cogollos muertos, número de individuos en fase larval de Elasmopalpuslignosellus(otro género), el número de especies de Diatraea y los parasitoides encontrados. En la determinación de cogollos muertos el reporte genera las siguientes salidas. Porcentaje de cogollos muertos (PCM). Porcentaje de parasitismo (PDP). Parasitismo por Cotesia (PPC). Parasitismo por Lydella (PPL). Porcentaje de Diatraeasaccharalis (PDS). Porcentaje de Diatraeacentrella (PDC). Porcentaje de Diatraea rosa (PDR). Porcentaje de Diatraeabusckella (PDB). Porcentaje de Diatraeaimpersonatella (PDI). Porcentaje de Elasmospalpus (PDE). Porcentaje de Valentinia (PDV).

Evaluación de daños por taladradores

En un 15 a 20% del área cultivada de cada unidad de producción se conforman tablones piloto. En cuatro puntos de muestreo por cada tablón piloto, se revisan 15 tallos y se registran las variables: número de entrenudos totales, entrenudos perforados y entrenudos taladrados. Paralelamente se cuantifica el número de especies de Diatraea, Valentinia y controladores biológicos como Cotesia, Lydella entre otros parasitoides. Con estos datos se obtienen las siguientes variables: Indice de Daños (ID), Intensidad de Infestación (II) e índice de Intensidad de Infestación (III), donde: ID = (Nro de tallos perforados/ Nro. de tallos totales) * 100, II = (Nro de entrenudos perforados/ No. de entrenudos totales) * 100 e III = (Nro de entrenudos taladrados/ Nro. de entrenudos totales) * 100. El ID permite conocer la proporción de tallos que presentan perforaciones por taladradores, por lo que es un indicativo muy general al momento de evaluar el daño. El II refleja el porcentaje de entrenudos perforados, es el parámetromás utilizado y difundido en la evaluación de daños por taladradores en Venezuela. El III se refiere al porcentaje de entrenudos con daño internamente. Por lo tanto, es necesario realizar cortes longitudinales en los tallos, razón por la cual se considera el valor más real con respecto al daño producido por los taladradores. Adicionalmente se obtienen las variables: Porcentaje de parasitismo (PDP). Parasitismo por Cotesia (PPC). Parasitismo por Lydella(PPL). Porcentaje de Diatraeasaccharalis (PDS). Porcentaje de Diatraeacentrella (PDC). Porcentaje de Diatraea rosa (PDR). Porcentaje de Diatraeabusckella (PDB). Porcentaje de Diatraeaimpersonatella (PDI). Porcentaje de Valentinia (PDV).

 

Umbrales económicos de infestación

El objetivo es obtener el umbral de daño económico (UDE) causado por el complejo de taladradores de la caña de azúcar. Como se sabe los taladradores del géneroDiatraea afectan el cultivo de la caña de azúcar al perforar y taladrar internamente los tallos del cultivo durante todas las etapas del desarrollo fenológico. Una de las consecuencias es la disminución del contenido de sacarosa y por ende de los rendimientos en la producción de azúcar por unidad de superficie (Kg/ha). En este método se determina el UDE partiendo del efecto que tiene el insecto (taladradores) en términos del porcentaje de entrenudos perforados conocido como intensidad de infestación (II) en relación con la disminución de contenido de azúcar, considerando adicionalmente las variables: rendimiento del cultivo en peso de los tallos(kg/ha), rendimiento en azúcar (Kg/ha), precio del azúcar en el mercado (Bs/tn), precio del control (Bs/ha) y eficiencia esperada de la medida de control (%/100). El procedimiento consiste en seleccionar las muestras (ocho a diez como mínimo) tomadas al azar del campo o del camión en el patio de molienda del central azucarero según sea la expectativa del usuario del método, cada una de 50 tallos, que llegan al laboratorio y se les determina el II. Luego se separan en tallos con perforaciones y tallos sanos (dos submuetras por cada muestra). Cada submuetra es entregada al laboratorio de análisis de jugo en el central azucarero o en el laboratorio de suelo agua y planta. Se obtiene para cada muestra la diferencia en el contenido de azúcar entre la submuetra sana y la submuetradañada. De esta manera se obtienen de ocho a diez pares de datos como mínimo, con los que se obtiene el modelo de regresión respectivo (y = ax + b), donde x es la II causada por Diatraea e y es la pérdida en el contenido de azúcar (diferencia entre tallos sanos y dañados). Antes de continuar se comprueba la validez estadística del modelo mediante el coeficiente de correlación r usando la tabla de valores críticos de r. De esta ecuación de regresión se conoce que el coeficiente de daño por Diatraea es b/100. El umbral fisiológico de daño por Diatraea (UF) es a/b (valor absoluto de a entre b). Finalmente se determina el UDE utilizando la siguiente expresión: UDE = (C/p * d* K) + UF, donde: C: Costo del control de Diatraea en Bs/ha p: Precio del azúcar en Bs/ha d: Coeficiente de daño  y K eficiencia de la medida de control esperada en %/100. UF. Umbral fisiológico de daño por Diatraea. Las variables resaltantes son el UF y el UDE. El primero es el nivel de II al cual el cultivo de caña de azúcar comienza a responder fisiológicamente frente al ataque del insecto, mientras que el UDE es el nivel de II causado por Diatraea en el cual se registran pérdidas de orden económico. Las variaciones del UF están sujetas a las condiciones agroecológicas y de manejo del cultivo por lo que puede ser utilizado y validado año tras año o zafra tras zafra. El UDE utiliza el valor de UF como proceso previo de investigación y su valor está sujeto diariamente a las características mercado agrícola de la caña de azúcar, a los rendimientos en caña y azúcar estimados para la zafra anual correspondiente y a la eficiencia esperada de la alternativa de control. Esta últimavaría entre el 40 y el 60% dependiendo de la utilización de uno o los dos insectos benéficos incorporables (Cotesiaflavipes y Lydellaminense). La utilización del alternativas deben utilizarse con niveles de II entre el UF y antes del UDE. Aunque este UDE puede ser manejado como valor referencial en el manejo integrado de plagas (MIP) para cada central azucarero e inclusive para cada áreaagroecológica, lo ideal es determinarlo para cada variedad, puesto que se ha demostrado un comportamiento diferencial de ellas frente al ataque de Diatraea.

Control biológico de Diatraeaspp.

Se estableció como método factible el control biológico ya que el insecto en su fase dañina se ubica dentro de los tallos. Lo parasitoides liberados, mosca amazónica y Cotesia, tienen la capacidad de ubicar y parasitar las larvas dentro de ellos. Se liberan 40 moscas/ha y 1000 avispitas/ha anualmente. La especie D. centrella no es parasitada por la mosca amazónica.

Parasitoides naturales identificados:

Spilochalcis duxWlk., TrichogrammaminutumRiley.,LydellaminensisTns., ParatheresiaclaripalpisWulp., JaynesleskiajaynesiAldr., SarcodexiastenodontisTns., Agathissacchari Myers., A. stigmateraCress., IpobracongrenadensisAshm., I. pennipensCam.,

  1. dolens. Cam., Spilocryptusdiatraeae Myers., Leskiopalpus diadema WIED., PalpozenilliapalpalisAldr, Apantelesdiatraea, Muses.

Zenillasp cerca de ochaetaWulp., Telenomussp., T. electoCrwf., AgathisparvifasciataCam., A. sacchari Myers.,

Depredadores identificados: 

Leptotracheluspuncticollis BATES., Doru lineare ESCH., AmblicoleusplatyderusChaud., ColeomegillamaculataDeg., Cyclonedasanguinea. L., Solenopsisgeminata F., Leptotratecheluspunctipollis Bates.,

Entomopatogenos identificados: 

Beauveriabassiana (Mont.) Vuill., Cordycepsbarberi Girad., Metarrhiziumanisopliae Sor

Hospederos

Andropogonsp. Brachiariaplantaginea. Cenchrusechinatus. Coixlachryma-jobi. Cymbopogoncitrates. Diectomisfastigiata. Digitariahorizontalis. Echinochloacolonum. Eleusine indica. E. Polystachya. Eriochloapunctata. Hackelochloagranularis. Hymenachneamplexicaulis. H. Auriculata. H. Donacifolia. Hyparrhenia rufa. Hordeumvulgare. Oryza latifolia. O. perennis. Panicumelephantipes. P. hirsutum. P. purpurascens. P. panioculatum. P. plicatulum. P. repens. Pennisetumpurpureum. Setariapaniculifera. S. poiretiana. Tripsacumlaxum. Oryza sativa. Paspalum: virgatum, fasciculatum, densum y paniculatum. Andropogonbicornis, Axonopusscoparius, Panicum grande, Zea mays. Sorghumvulgare. Panicummaximum. Paspalumfasciculatum. Triticumgestivum, Tripsacumcustrale.

Euchlaena mexicana. Axonopusaureus. Paspalumsaccharoides. Saccharumsinense. Paspalumvirgatum, P. densum . P. paniculatum. Panicummaximum. Paspalumfasciculatum. Saccharumofficinarum. Paspalumsaccharoides.

Distribución geográfica

La especie D.saccharalisestá localizada en todos los agroecosistemascañeros venezolanos, mientras que D. impersonatellasólo se ubica en el área de influencia del Central Tocuyo (municipio Morán, estado Lara). La especie D. busckella se localiza en el área de influencia de los centrales Carora y la Pastora (municipio Torres, estado Lara) y en menor proporción en el central Motatan (estado Trujillo), el Tocuyo (estado Lara) y Matilde(municipio Bruzual, estado Yaracuy). Las especies D. rosa y D. centrella se localizan en los estados Aragua, Carabobo, Yaracuy, Lara, Portuguesa, Trujillo, Zulia, Táchira, Mérida y Monagas.

Referencias

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*Ingeniero Agrónomo (UCLA, 1977), Magíster Scientiarum en Entomología (UCV, 1987) y Doctor en Entomología (UCV, 1997). Con experiencia en Bioecología, clasificación y control biológico de los insectos de la caña de azúcar. Manejo Integrado de Insectos en caña de azúcar, maíz, tomate agroindustrial, melón y tabaco. Vigilancia y pronósticos en la protección vegetal integrada. Experiencia docente en la Escuela Técnica Agropecuaria (ETA Turén, 1983-84), universitaria Instituto Universitario de Tecnología del Yaracuy (IUTY, San Felipe, 1989-92) y en la Escuela Superior de Agricultura Tropical (ESAT Lara, 2007 2009). Comisionado de Ciencia y Tecnología para el estado Yaracuy (1994-2004). Editor de la Revista Científica Semestral Caña de Azúcar (1998–2006). Director del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIA Yaracuy, 2004-2007). Investigador V del INIA Portuguesa y Yaracuy en Entomología (1980-2009). Último proyecto: Responsable por Venezuela del convenio INIA-FONTAGRO (2007-2009). Miembro principal del Directorio del Centro de Investigaciones del Estado para la Producción Agroindustrial (CIEPE, 2005-2009). Jubilado INIA a partir del 31/07/09


Blas Linares es colaborador destacado de Mundo Agropecuario

 

Este trabajo fue enviado por el autor o autores para Mundo Agropecuario, en caso que se desee reproducir le agradecemos se destaque el nombre del autor o autores y el de Mundo Agropecuario, redireccionando hacia el artículo original.

 

 

 

 

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